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    晶體-細胞相互作用的蛋白質(zhì)組學(xué):腎結石研究的模型

    來(lái)源:科技資料庫 瀏覽 571 次 發(fā)布時(shí)間:2022-09-20

    晶體-細胞相互作用的蛋白質(zhì)組學(xué):腎結石研究的模型


    腎結石/尿石癥(即腎結石?。┤匀皇且粋€(gè)全球公共衛生問(wèn)題,發(fā)病率/患病率不斷上升。腎結石最常見(jiàn)的化學(xué)成分是草酸鈣,它通過(guò)結晶、晶體生長(cháng)、晶體聚集、晶體細胞粘附和通過(guò)腎間質(zhì)中的細胞外基質(zhì)侵入來(lái)引發(fā)結石形成。在這些過(guò)程中,晶體-細胞相互作用(定義為“細胞通過(guò)粘附在細胞表面或內化到細胞中的晶體的任何方式的影響而改變細胞的現象,伴隨著(zhù)晶體的變化,例如,細胞誘導的生長(cháng),粘合能力,降解等”)對于晶體在腎臟中的保留非常重要。在過(guò)去的12年中,蛋白質(zhì)組學(xué)已廣泛應用于腎結石研究,旨在更好地了解腎結石形成的致病機制。本文概述了該領(lǐng)域的當前知識,并總結了從所有將蛋白質(zhì)組學(xué)應用于晶體-細胞相互作用研究的研究中獲得的數據,這些研究隨后導致了功能研究,以解決表達蛋白質(zhì)組學(xué)數據在腎結石疾病發(fā)病機制中的顯著(zhù)影響或功能作用。


    1.引言


    腎結石病仍然是一種常見(jiàn)的人類(lèi)疾病,在全球發(fā)達國家和發(fā)展中國家都可以找到[1,2,3]。腎結石主要由含鈣晶體組成,特別是草酸鈣(CaOx)一水合物(COM)和二水合鈣(COD)[1,2,3]。腎結石形成的機制過(guò)程相當復雜,涉及結晶、晶體生長(cháng)、晶體聚集、晶體細胞粘附以及通過(guò)腎間質(zhì)中的細胞外基質(zhì)(ECM)侵入晶體[4,5,6]。結晶既可以在腎小管內(管內模型)內發(fā)生,也可以發(fā)生在腎間質(zhì)(蘭德?tīng)柊邏K模型)[4,5,6]。晶體形成后,單個(gè)晶體通過(guò)晶體生長(cháng)或聚集機制成為較大的顆粒[7,8]。此外,晶體-細胞粘附導致晶體潴留到腎小管或間質(zhì)內[9,10]。粘附的晶體可以?xún)然侥I小管細胞中進(jìn)行降解,反之亦然,通過(guò)炎癥級聯(lián)反應進(jìn)一步增強結石形成過(guò)程[11,12]。最后,在腎間質(zhì)中形成的內化晶體可以使用纖溶酶-纖溶酶原途徑[13]通過(guò)ECM侵入或遷移到其他部位,隨后引發(fā)組織炎癥和侵蝕[14,15]。


    有趣的是,晶體保留和結石形成的關(guān)鍵過(guò)程之一是晶體-細胞粘附步驟,需要“晶體-細胞相互作用”,這可以在這里定義為細胞被粘附在細胞表面或內化到細胞中的晶體的任何影響而改變的現象,伴隨著(zhù)晶體的變化,例如,細胞誘導的生長(cháng)、粘合能力、降解等。使用術(shù)語(yǔ)“相互作用”是通過(guò)晶體和細胞之間的“相互作用”來(lái)邏輯的。很明顯,晶體可以引起細胞中的許多變化,從輕度到重度細胞毒性[14,15,16]。另一方面,細胞的組成,特別是在頂端表面和內吞囊泡中,會(huì )影響晶體的生長(cháng),粘合能力和降解[17,18]。這種相互作用可以增強腎內晶體的保留和晶體進(jìn)入腎小管細胞的內吞作用。此外,晶體-細胞相互作用也可導致腎小管細胞損傷和炎癥級聯(lián)反應,從而進(jìn)一步增強結石形成過(guò)程[14,15,16]。


    在蛋白質(zhì)組學(xué)時(shí)代,蛋白質(zhì)組學(xué)已被廣泛應用于各種腎臟疾病[19,20,21]。在過(guò)去的12年中,蛋白質(zhì)組學(xué)已廣泛應用于腎結石疾?。ㄓ绕涫荂OM和COD類(lèi)型)的研究,旨在更好地了解腎結石形成的致病機制[22,23]。本文總結了所有將蛋白質(zhì)組學(xué)應用于晶體-細胞相互作用研究的研究,這些研究隨后導致了功能研究,以解決表達蛋白質(zhì)組學(xué)數據在腎結石疾病發(fā)病機制中的顯著(zhù)影響或功能作用。請注意,這些研究應用蛋白質(zhì)組學(xué)從結石形成者中鑒定尿液或腎結石基質(zhì)中的蛋白質(zhì),而沒(méi)有任何證據表明“晶體-細胞相互作用”(見(jiàn)上面的定義),被排除在本評價(jià)之外(因為其中許多蛋白質(zhì)只是與尿液中的結石調節劑混合,或者只是在結石腫大期間通過(guò)停滯卡在結石基質(zhì)內,而在結石發(fā)病機制中沒(méi)有任何作用)。腎結石研究中與CaOx晶體-細胞相互作用的蛋白質(zhì)組學(xué)相關(guān)的所有相關(guān)研究總結在表1并討論如下。


    表1與CaOx晶體-細胞相互作用的蛋白質(zhì)組學(xué)相關(guān)的所有相關(guān)研究摘要。


    年作者/參考文獻晶體-細胞相互作用的條件蛋白質(zhì)組學(xué)技術(shù)/功能檢測主要發(fā)現不同劑量和類(lèi)型的CaOx晶體對腎小管細胞細胞蛋白質(zhì)組的影響2008塞曼戈恩等[24]細胞:MDCK細胞(全細胞)


    晶體:100μg/mL COM


    培養:48小時(shí)2-DE,西普羅紅寶石染色,Q-TOF質(zhì)譜和質(zhì)譜/質(zhì)譜11種上調和5種下調蛋白質(zhì),在轉錄/翻譯,信號轉導,細胞代謝和生長(cháng),核和細胞結構,運輸,應激反應和生物合成中發(fā)揮作用。2008通布克德五世等[25]]細胞:MDCK細胞(全細胞)


    晶體:1000μg/mL COM孵育:48小時(shí)2-DE,西普羅紅寶石染色,Q-TOF質(zhì)譜和質(zhì)譜/質(zhì)譜鑒定出25種上調和23種下調蛋白質(zhì)。當伴侶被上調時(shí),參與蛋白質(zhì)合成,細胞周期調節,細胞結構和細胞信號傳導的其他蛋白質(zhì)被下調。2008塞曼戈恩T等[26]細胞:MDCK細胞(全細胞)


    晶體:100μg/mL COD


    孵育:48小時(shí)2-DE,西普羅紅寶石染色,Q-TOF質(zhì)譜和質(zhì)譜/質(zhì)譜5種上調和5種下調蛋白質(zhì),控制細胞代謝,結構,完整性,信號轉導和應激反應。2010陳S等[27]]細胞:HK-2細胞(全細胞)


    晶體:200μg/mL COM


    培養:12小時(shí)2-DE銀二胺染色,LC-靜電放電微粒/微粒9種上調和3種下調蛋白質(zhì),在能量產(chǎn)生,細胞增殖,細胞凋亡,應激反應,鈣平衡和蛋白質(zhì)合成中起作用。2011蔣宗華等[28]細胞:MDCK細胞(全細胞)


    晶體:100μg/mL COD


    孵育:48小時(shí)2-DE、Pro-Q祖母綠糖蛋白染色、西普羅紅寶石總蛋白染色、Q-TOF質(zhì)譜和質(zhì)譜/質(zhì)譜在16種顯著(zhù)改變的糖蛋白中,3個(gè)蛋白酶體亞基的糖型上調,而肌動(dòng)蛋白相關(guān)蛋白3(ARP3)的糖型下調。2012柴亞里特S等[29]細胞:MDCK細胞(純化的線(xiàn)粒體)


    晶體:100微克/毫升COM


    孵育:48小時(shí)2-DE,深紫色染色,Q-TOF質(zhì)譜和質(zhì)譜/質(zhì)譜,氧合分印跡測定12種上調和3種下調線(xiàn)粒體蛋白,調節細胞結構,新陳代謝和能量產(chǎn)生。COM晶體還誘導線(xiàn)粒體功能障礙和氧化修飾蛋白在細胞中的積累。2017維奈法特A等[30]細胞:MDCK細胞(全細胞)


    晶體:100/1000μg/mL COD/COM


    培養:48小時(shí)蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用網(wǎng)絡(luò )分析,熒光素-熒光素酶ATP測定,氧化印跡測定,泛素化蛋白質(zhì)的測量,細胞死亡測定和晶體-細胞粘附測定與低劑量相比,高劑量的這些晶體引起細胞蛋白質(zhì)組更明顯的變化,并且COM比COD更有效地誘導細胞蛋白質(zhì)組的改變。用高劑量處理的細胞具有更高水平的細胞內ATP,氧化修飾蛋白和細胞死亡,但泛素化蛋白水平較低。COM也誘發(fā)比COD更嚴重的細胞毒性。用抗氧化劑EGCG對細胞進(jìn)行預處理可以降低晶體誘導的氧化修飾蛋白的積累和細胞的晶體結合能力。2018皮拉彭P等[31]]細胞:MDCK細胞(全細胞)


    晶體:1000μg/mL COM孵育:48小時(shí)蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用網(wǎng)絡(luò )分析、增殖測定、傷口愈合測定、氧化印跡測定、熒光素-熒光素酶ATP測定和經(jīng)上皮耐藥性(TER)測量用1000μg/mL COM晶體處理的細胞毒性細胞在細胞增殖,傷口愈合能力,TER以及緊密連接蛋白zonula閉塞-1(ZO-1)和信號蛋白RhoA的水平方面存在降低。相反,細胞內ATP和氧化修飾蛋白的水平升高。腎小管細胞頂端表面COM晶體受體的蛋白質(zhì)組鑒定2011方恩根等[32]細胞:MDCK細胞(純化的頂端膜)


    晶體:COM


    孵育:過(guò)夜甲基纖維素/質(zhì)譜、Q-TOF質(zhì)譜和質(zhì)譜/質(zhì)譜、晶體細胞粘附測定、抗體中和測定共鑒定出96個(gè)潛在的COM晶體受體。膜聯(lián)蛋白II作為COM晶體受體的作用通過(guò)使用特異性抗體的中和測定得到證實(shí)。2012舒替蓬坦酸S等[33]]細胞:MDCK細胞(全細胞和純化的頂膜)


    晶體:100μg/mL COM


    孵育:30分鐘,72小時(shí)2-DE、西普魯比紅寶石染色、Q-TOF質(zhì)譜和質(zhì)譜分析、晶體-細胞粘附測定、鈣誘導測定、抗體中和測定膜聯(lián)蛋白A1作為COM晶體受體。2013坎拉亞R等[34]]細胞:MDCK細胞(全細胞和純化的頂膜)


    晶體:100μg/mL COM


    培養:30分鐘,72小時(shí)2-DE、西普羅紅寶石染色、Q-TOF質(zhì)譜和質(zhì)譜/質(zhì)譜、晶體細胞粘附測定、草酸鹽誘導試驗、抗體中和測定A-烯醇化酶作為COM晶體受體。2016皮拉彭P等[35]]細胞:MDCK細胞(全細胞和純化的頂膜)


    晶體:100μg/mL COM


    孵育:30分鐘晶體-細胞粘附測定、鈣誘導測定膜聯(lián)蛋白A1作為COM晶體受體。2016方恩根等[36]細胞:MDCK細胞(整個(gè)細胞和純化的頂膜)


    晶體:100μg/mL COM


    孵育:1小時(shí)晶體細胞粘附測定、抗體中和測定A-烯醇化酶作為COM晶體受體。2016方恩根等[37]細胞:MDCK細胞(全細胞和純化的頂膜)


    晶體:100μg/mL COM


    培養:1小時(shí),48小時(shí)晶體-細胞粘附測定、晶體內化測定、抗體中和測定、小干擾RNA(siRNA)敲低蛋白質(zhì)HSP90用作COM晶體受體。2016馬尼索恩J等[38]]細胞:MDCK細胞(全細胞和純化的頂膜)


    晶體:100μg/mL COM


    孵育:30分鐘晶體-細胞粘附測定、蛋白質(zhì)過(guò)表達、草酸鹽誘導測定A-微管蛋白過(guò)表達導致三種COM晶體受體的下調,包括α烯醇化酶,HSP70和HSP90,并降低了細胞的晶體結合能力。2016彭薩庫爾N等[39]]細胞:MDCK細胞(全細胞)


    晶體:100μg/mL COM


    孵育:30分鐘晶體-細胞粘附測定、siRNA蛋白質(zhì)敲低、草酸鹽誘導測定層粘連蛋白A/C敲低導致四種COM晶體受體的水平降低,包括維生素A,α烯醇化酶,S100和膜聯(lián)蛋白A2,并且細胞的晶體結合能力下降。2018馬尼索恩J等[40]]細胞:HEK293T細胞(全細胞)


    晶體:100μg/mL COM


    培養:1小時(shí)晶體-細胞粘附測定,通過(guò)siRNA敲低蛋白質(zhì)HSP90用作COM晶體受體。2018維奈法特A等[41]細胞:MDCK細胞(整個(gè)細胞和純化的頂膜)


    晶體:100μg/mL COM


    孵育:1小時(shí)晶體-細胞粘附測定、晶體內化測定、抗體中和測定PMCA2用作COM晶體受體。COM晶體對單核細胞和巨噬細胞細胞蛋白質(zhì)組的影響2010辛格托N等[42]細胞:U937細胞(全細胞)


    晶體:100μg/mL COM


    培養:24小時(shí)2-DE,深紫色染色,Q-TOF質(zhì)譜和質(zhì)譜/質(zhì)譜9種上調蛋白質(zhì)和13種下調蛋白質(zhì),在細胞周期,細胞結構,碳水化合物代謝,脂質(zhì)代謝,mRNA加工以及蛋白質(zhì)合成,穩定和降解中起作用。2013辛格托N等[43]]細胞:人巨噬細胞(全細胞)


    晶體:100μg/mL COM


    孵育:24小時(shí)2-DE,深紫色染色,Q-TOF質(zhì)譜和質(zhì)譜/質(zhì)譜,吞噬作用測定,通過(guò)SIRNA敲低蛋白質(zhì)7種上調和7種下調蛋白質(zhì),控制細胞結構,碳水化合物代謝,DNA/RNA加工,蛋白質(zhì)代謝,分子運輸和應激反應。HSP90在巨噬細胞的吞噬體形成和吞噬活性中起著(zhù)至關(guān)重要的作用。COM晶體對分泌組和外泌體蛋白質(zhì)組的影響2016蔣宗華等[13]細胞:MDCK細胞(分泌組)


    晶體:100μg/mL COM


    培養:20小時(shí)2-DE,深紫色染色,Q-TOF MS/MS,晶體遷移測定,細胞遷移測定COM晶體誘導2個(gè)來(lái)自腎小管細胞的分泌蛋白增加和4個(gè)減少。分泌性烯醇化酶-1的增加反過(guò)來(lái)又通過(guò)ECM增強了COM晶體的侵入。2016辛提普倫格拉特K等[44]]細胞:U937細胞(分泌組)


    晶體:100μg/mL COM


    孵育:16小時(shí)2-DE,深紫色染色,Q-TOF質(zhì)譜和質(zhì)譜/質(zhì)譜COM晶體誘導了14個(gè)與U937單核細胞免疫反應和細胞存活相關(guān)的分泌蛋白增加和4個(gè)減少。增加的HSP90局限于細胞表面。2018辛格托N等[45]細胞:人巨噬細胞(外泌體)


    晶體:100μg/mL COM


    孵育:24小時(shí)2-DE,深紫色染色,納米LC-ESI-ETD MS/MS,細胞遷移測定,吞噬作用測定,通過(guò)siRNA敲低蛋白質(zhì)2種上調和4種下調外泌體蛋白。來(lái)自晶體相互作用的巨噬細胞的外泌體誘導單核細胞的遷移/活化和巨噬細胞的吞噬活性。siRNA敲低了維生素素,成功地抑制了來(lái)自COM晶體暴露巨噬細胞的外泌體的這種作用。2018辛格托N等[46]細胞:人巨噬細胞(外泌體)


    晶體:100μg/mL COM


    孵育:24小時(shí)納米LC-ESI-Qq-TOF,細胞遷移試驗,晶體結合試驗,晶體遷移試驗7種上調和19種下調外泌體蛋白。來(lái)自晶體相互作用巨噬細胞的外泌體誘導中性粒細胞遷移,增強腎小管細胞中促炎細胞因子IL-8的產(chǎn)生,與COM晶體具有更大的結合能力,并通過(guò)ECM激活晶體入侵。


    2.不同劑量和類(lèi)型的CaOx晶體對腎小管細胞細胞蛋白質(zhì)組的影響


    應用于晶體-細胞相互作用的蛋白質(zhì)組學(xué)的首次研究是在2008年完成的[24]。在這項工作中,仔細建立了研究模型,表明劑量為100μg/mL(每體積培養基)的COM晶體在48小時(shí)的潛伏期不會(huì )對腎小管細胞造成嚴重的細胞毒性,并且細胞死亡百分比不會(huì )增加。因此,由COM晶體誘導的細胞蛋白質(zhì)組的變化反映了細胞對COM晶體的反應,而不是它們的細胞毒性作用。此外,掃描電子顯微鏡(SEM)在與細胞孵育后顯示出COM晶體邊界的扭曲,首次表明晶體-細胞相互作用具有直接的實(shí)驗證據。使用二維凝膠電泳(2-DE)與Sypro Ruby熒光染色,然后進(jìn)行四極桿飛行時(shí)間(Q-TOF)質(zhì)譜(MS)和串聯(lián)MS(MS/MS),鑒定了11種上調和5種下調蛋白質(zhì),它們在轉錄/翻譯,信號轉導,細胞代謝和生長(cháng),核和細胞結構,運輸,應激反應和生物合成中起作用。其中一些蛋白質(zhì)組學(xué)數據通過(guò)二維(2-D)蛋白質(zhì)印跡得到證實(shí)[24]。


    隨后,進(jìn)行了一項亞細胞蛋白質(zhì)組研究[29],以評估100μg/mL COM晶體對線(xiàn)粒體蛋白質(zhì)組的影響以及使用高度純化的線(xiàn)粒體分離方法暴露于晶體48小時(shí)的腎小管細胞的功能[47]。使用2-DE與深紫色熒光染色的比較分析,然后是Q-TOF MS和MS/MS分析,確定了12種上調和3種下調線(xiàn)粒體蛋白,它們調節細胞結構,代謝和能量產(chǎn)生。此外,Oxyblot檢測表明,COM晶體誘導線(xiàn)粒體功能障礙和氧化修飾蛋白在細胞中的積累[29]。


    另一項使用較高劑量(200μg/mL)COM晶體的研究顯示,當腎小管細胞與COM晶體和2 mM草酸鹽一起孵育較短時(shí)間(僅12小時(shí))時(shí),細胞死亡不會(huì )增加[27]。使用2-DE銀染色,然后液相色譜法結合電噴霧電離MS/MS(LC-ESI MS/MS),數據顯示9種上調和3種下調細胞蛋白,其作用于能量產(chǎn)生,細胞增殖,凋亡,應激反應,鈣平衡和蛋白質(zhì)合成。


    使用高得多劑量(1000μg/mL)的COM晶體,細胞在與晶體孵育48小時(shí)后,細胞發(fā)生嚴重細胞毒性,總細胞死亡增加[25]。使用2-DE與西普羅紅寶石染色,然后進(jìn)行Q-TOF MS和MS/MS分析,鑒定出25種上調和23種下調蛋白。EZRIN、烯醇化酶-1和膜聯(lián)蛋白-A1水平的降低通過(guò)2-D蛋白質(zhì)印跡得到證實(shí)。有趣的是,伴侶被上調,而其他參與蛋白質(zhì)合成、細胞周期調控、細胞結構和細胞信號傳導的蛋白質(zhì)被下調[25]。最近使用各種測定方法進(jìn)行了功能研究,以確定該表達蛋白質(zhì)組學(xué)數據集的生物學(xué)相關(guān)性[31]。最初,所有顯著(zhù)改變的蛋白質(zhì)被提交給STRING生物信息學(xué)工具[48]以獲得蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用網(wǎng)絡(luò ),其揭示了細胞增殖/傷口愈合,氧化應激/線(xiàn)粒體功能以及細胞連接復合物/完整性是顯著(zhù)改變蛋白質(zhì)的主要生物學(xué)功能。驗證實(shí)驗表明,用1000μg/mL COM晶體處理的細胞毒性腎小管細胞在細胞增殖、傷口愈合能力、經(jīng)上皮阻力(TER)以及閉塞-1(ZO-1)和信號蛋白RhoA的緊密連接蛋白水平方面均有所下降。相反,氧化修飾蛋白的水平升高。雖然ATP合酶α亞基前體減少,但參與能量產(chǎn)生和穩態(tài)的其他線(xiàn)粒體蛋白(例如烏頭酶、腺苷酸激酶2、泛醇-細胞色素-c還原酶)增加[25]。結果,COM處理的細胞中的細胞內ATP水平升高[31]。這些數據可能反映了COM晶體誘導的微管毒性期間發(fā)生的細胞過(guò)程[31]。


    蛋白質(zhì)組學(xué)還應用于研究暴露于無(wú)毒劑量(100μg/mL)的COD晶體48小時(shí)后腎小管細胞細胞蛋白質(zhì)組的變化[26]。使用2-DE和Sypro Ruby染色,然后進(jìn)行Q-TOF MS和MS/MS分析,數據顯示5種上調和5種下調蛋白質(zhì)控制細胞代謝、結構、完整性、信號轉導和應激反應[26]。隨后,研究了100μg/mL COD晶體誘導的腎小管細胞糖蛋白組的變化[28]。使用2-DE和Pro-Q祖母綠糖蛋白染色,然后使用Sypro Ruby總蛋白染色進(jìn)行歸一化,Q-TOF MS和MS/MS鑒定了16個(gè)顯著(zhù)改變的糖蛋白,包括負責調節細胞-細胞解離的3個(gè)蛋白酶體亞基的糖型和在細胞完整性中起作用的肌動(dòng)蛋白相關(guān)蛋白3(ARP3)。這些數據表明,COD晶體導致細胞解離并降低細胞完整性[28]。


    此外,還對暴露于不同劑量和類(lèi)型的CaOx晶體后腎小管細胞的功能擾動(dòng)進(jìn)行了比較分析[30]。表達數據的比較表明,與低劑量相比,這些晶體的高劑量引起細胞蛋白質(zhì)組更明顯的變化,并且COM比COD更有效地誘導細胞蛋白質(zhì)組的改變。功能分析顯示,在用高劑量COM和COD處理的細胞中,細胞內ATP,氧化修飾蛋白和細胞死亡水平較高,但泛素化蛋白水平較低。COM晶體也誘導比COD更嚴重的細胞毒性。用抗氧化劑表沒(méi)食子兒茶素沒(méi)食子酸酯(EGCG)對細胞進(jìn)行預處理可以降低晶體誘導的氧化修飾蛋白的積累和細胞的晶體結合能力。這些數據強調了高劑量與低劑量以及COM與COD晶體在腎小管細胞中誘導功能性擾動(dòng)的差異效應。研究結果還表明,氧化應激可能在用這些不同劑量/類(lèi)型的晶體處理的細胞的晶體結合能力中起重要作用[30]。


    然而,應該注意的是,COM/COD晶體的劑量及其暴露于所有上述體外研究中應用的細胞的時(shí)間可能并不完全代表結石成型劑中的體內狀況,這可能伴隨著(zhù)腎結石發(fā)病機制的另一個(gè)模型,即Randall的斑塊模型。目前,晶體-細胞相互作用的體內研究似乎尚未用于腎結石研究,因為限制(實(shí)際上缺乏)跟蹤體內晶體-細胞相互作用的技術(shù)。當這種技術(shù)可用時(shí),腎結石形成的致病機制將更加清晰。


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    3.腎小管細胞頂端表面COM晶體受體的蛋白質(zhì)組學(xué)鑒定


    腎結石研究在細胞水平上取得重大飛躍的另一步是開(kāi)發(fā)一種簡(jiǎn)單但有效的剝離方法來(lái)分離和純化極化腎小管細胞的頂膜[49]。這種新方法主要依賴(lài)于所施加的表面(例如,Whatman濾紙,硝酸纖維素膜,玻璃紙或玻璃蓋玻片)的吸附能力,以利用這些表面和頂端膜之間的含水親和力和離子相互作用與頂端膜粘附。在測試的這4個(gè)表面中,濾紙是分離和純化頂端膜的最有效一種,而基底外側膜蛋白沒(méi)有任何污染,這已通過(guò)免疫印跡和免疫熒光染色證實(shí)[49]。與傳統的生化測定(主要使用基于離心的方法)相比,剝離方法在分離/純化頂端膜方面要有效得多。


    該剝離方法用于分離極化腎小管細胞頂膜的高度純化部分,然后鑒定細胞表面的潛在COM晶體受體[32]。將回收的蛋白質(zhì)重懸于人工尿液中,并與COM晶體一起孵育過(guò)夜。洗滌和洗脫后,凝膠增強液相色譜法,然后串聯(lián)MS(GeLC-MS/MS)共鑒定出96個(gè)潛在的COM晶體受體。其中,膜聯(lián)蛋白II作為COM晶體受體的作用通過(guò)晶體-細胞粘附試驗驗證,然后使用特異性抗膜聯(lián)蛋白II抗體進(jìn)行中和[32]。此外,其他COM晶體受體也在隨后的研究中得到證實(shí),包括α烯醇化酶[34,36]、膜聯(lián)蛋白A1[33,35]、熱休克蛋白90(HSP90)[37,40]和質(zhì)膜Ca2+異肽酶2(PMCA2)[41]。


    其他不作為COM晶體受體但其作用與各種COM晶體受體相關(guān)的蛋白質(zhì),包括α-微管蛋白和層粘連蛋白A/C.A-微管蛋白(一種細胞骨架蛋白)被鑒定為使用蛋白質(zhì)組學(xué)方法用1000μg/mL COM晶體處理的腎小管細胞中的下調蛋白質(zhì)之一[25],并作為蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用網(wǎng)絡(luò )的中心節點(diǎn)[38]].α-微管蛋白的過(guò)表達導致3種COM晶體受體的下調,包括α烯醇化酶、熱休克蛋白70(HSP70)和HSP90,并且細胞的晶體結合能力下降[38]。相比之下,另一項蛋白質(zhì)組學(xué)研究發(fā)現,層粘連蛋白A/C(一種核層蛋白)是用100μg/mL COM晶體處理的腎小管細胞中的上調蛋白質(zhì)之一[24],并作為蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用網(wǎng)絡(luò )的中心節點(diǎn)[39]。小干擾RNA(siRNA)敲低層粘連蛋白A/C導致4種COM晶體受體(包括維門(mén)汀、α烯醇化酶、S100和膜聯(lián)蛋白A2)的水平降低,并且細胞的晶體結合能力下降[39]。這些數據表明,層粘連蛋白A/C具有各種功能,包括調節其他蛋白質(zhì)的表達。對上述COM晶體受體及其調節劑或相關(guān)蛋白質(zhì)的表征可能導致進(jìn)一步發(fā)展策略,通過(guò)阻斷COM晶體粘附在細胞上和晶體保留在腎內來(lái)防止腎結石的形成。


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    4.COM晶體對單核細胞和巨噬細胞細胞蛋白質(zhì)組的影響


    CaOx晶體不僅與腎小管細胞相互作用,還與單核細胞和巨噬細胞相互作用,它們在進(jìn)一步加重腎結石形成的炎癥過(guò)程中起重要作用。因此,蛋白質(zhì)組研究已經(jīng)研究了單核細胞/巨噬細胞響應COM晶體的作用。將人單核細胞U937細胞與100μg/mL COM晶體一起孵育24小時(shí),并檢查細胞蛋白質(zhì)組的變化[42]。使用2-DE進(jìn)行深紫色熒光染色,然后進(jìn)行Q-TOF MS和MS/MS分析,結果顯示9種蛋白質(zhì)的水平升高,13種蛋白質(zhì)的水平降低,這些蛋白質(zhì)在細胞周期、細胞結構、碳水化合物代謝、脂質(zhì)代謝、mRNA加工以及蛋白質(zhì)合成、穩定和降解中的作用[42]。


    后來(lái),采用類(lèi)似的方法研究人巨噬細胞與100μg/mL COM晶體相互作用24小時(shí)后細胞蛋白質(zhì)組的變化[43]。比較蛋白質(zhì)組分析揭示了7種上調和7種下調蛋白質(zhì),它們控制細胞結構,碳水化合物代謝,DNA/RNA加工,蛋白質(zhì)代謝,分子運輸和應激反應。有趣的是,蛋白-蛋白相互作用網(wǎng)絡(luò )分析表明,HSP90直接與β肌動(dòng)蛋白和α微管蛋白相互作用,所有這些相互作用的伙伴在COM處理的巨噬細胞中都上調。功能研究表明,只有肌動(dòng)蛋白與HSP90共定位在被吞噬的COM晶體周?chē)?,形成吞噬體結構。siRNA對HSP90的敲低抑制了吞噬體的形成以及COM晶體誘導的巨噬細胞的吞噬和遷移活性。這些數據表明,HSP90不僅作為COM晶體受體,而且在巨噬細胞的吞噬體形成和吞噬活性中也起著(zhù)至關(guān)重要的作用[43]。


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    5.COM晶體對分泌組和外泌體蛋白質(zhì)組的影響


    除了COM晶體誘導的細胞蛋白質(zhì)組的改變外,還使用蛋白質(zhì)組學(xué)方法研究了晶體-細胞相互作用對分泌組的影響。對于腎小管細胞,100μg/mL COM晶體導致2種分泌蛋白水平升高,4種分泌蛋白水平降低[13]。有趣的是,使用先前建立的基于纖溶酶原-纖溶酶活性的晶體遷移測定法進(jìn)行了功能研究[50]。數據顯示,分泌性烯醇化酶-1的增加反過(guò)來(lái)又通過(guò)ECM促進(jìn)COM晶體侵襲和單核細胞的遷移[13]。對于人單核細胞,用U937單核細胞孵育100μg/mL COM晶體16 h可誘導細胞中14個(gè)分泌蛋白增加和4個(gè)減少[44]。有趣的是,一項免疫熒光研究檢測到細胞表面的HSP90增加,這表明其增加的分泌可能來(lái)自非經(jīng)典分泌途徑[44]。


    為了證實(shí)COM可以通過(guò)非經(jīng)典分泌途徑誘導分泌組的變化,隨后的研究調查了來(lái)自人類(lèi)巨噬細胞的外泌體蛋白質(zhì)組的改變。使用基于凝膠的[45]和無(wú)凝膠[46]定量蛋白質(zhì)組學(xué)方法,鑒定出許多顯著(zhù)改變的外泌體蛋白。有趣的是,暴露于COM晶體的巨噬細胞產(chǎn)生更高水平的白細胞介素-1β(IL-1β),這是炎癥小體活化標志物之一[51,52]。此外,來(lái)自這些晶體相互作用巨噬細胞的外泌體誘導單核細胞的遷移/活化,單核細胞產(chǎn)生更高水平的白細胞介素-8(IL-8)(一種促炎細胞因子),其作為旁分泌激活巨噬細胞的吞噬活性[45]。siRNA敲低了一種上調蛋白(維門(mén)?。?,成功地抑制了來(lái)自COM晶體暴露巨噬細胞的外泌體的這種作用[45]。此外,來(lái)自這些晶體相互作用巨噬細胞的外泌體誘導中性粒細胞遷移,增強腎小管細胞中促炎細胞因子IL-8的產(chǎn)生,與COM晶體的結合能力更強,并通過(guò)ECM激活晶體入侵[46]。


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    6.結論


    在過(guò)去的12年中,蛋白質(zhì)組學(xué)已成功應用于腎結石研究,旨在更好地了解腎結石形成的致病機制,特別是在晶體-細胞相互作用(表1).這些研究的第一階段主要涉及與COM晶體相互作用后腎小管細胞中改變的全細胞蛋白質(zhì)組的表征。隨后,亞細胞蛋白質(zhì)組學(xué)揭示了細胞與COM晶體相互作用后線(xiàn)粒體蛋白質(zhì)組變化和線(xiàn)粒體功能障礙的其他信息。此外,對不同劑量和類(lèi)型的CaOx晶體對腎小管細胞細胞蛋白質(zhì)組的影響的功能研究,使得更好地理解受晶體-細胞相互作用影響的腎小管細胞的表達和功能擾動(dòng)(見(jiàn)第2節)。在開(kāi)發(fā)出一種簡(jiǎn)單而高效的方法來(lái)從極化的腎小管細胞中純化頂膜之后,該領(lǐng)域發(fā)生了一個(gè)巨大的飛躍。特別是,蛋白質(zhì)組學(xué)鑒定了大量潛在的COM晶體受體,然后在隨后的幾項研究中進(jìn)行了功能驗證。這些發(fā)現對于進(jìn)一步制定通過(guò)阻斷致病晶體與靶腎小管細胞之間的結合來(lái)預防腎結石形成的策略非常重要(見(jiàn)第3節)。除腎小管細胞外,蛋白質(zhì)組學(xué)還應用于研究人單核細胞/巨噬細胞細胞蛋白質(zhì)組的變化,這些變化導致更清楚地了解消除粘附和內化CaOx晶體和炎癥反應的機制(見(jiàn)第4節)。此外,還開(kāi)發(fā)了幾種功能測定方法,以解決從蛋白質(zhì)組學(xué)研究的初始階段鑒定的表達數據的功能意義。例如,鑒定由COM晶體誘導的改變的分泌蛋白,這反過(guò)來(lái)又加劇了通過(guò)ECM的晶體入侵。最后,最近關(guān)于巨噬細胞外泌體在腎結石形成炎癥級聯(lián)中的作用的知識提供了額外的新信息,以更好地了解晶體-細胞相互作用期間的炎癥級聯(lián)反應(見(jiàn)第5節)。綜上所述,所有這些發(fā)現都有助于更好地了解腎結石病的致病機制,特別是在晶體-細胞相互作用的步驟中。此外,這些發(fā)現還可能導致開(kāi)發(fā)新的策略來(lái)預防新的和/或復發(fā)的腎結石的形成。

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